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食用菌粗蛋白質(zhì)含量測(cè)定方法

食用菌粗蛋白質(zhì)含量測(cè)定方法

食用菌粗蛋白質(zhì)含量測(cè)定方法

1.適用范圍

本方法適用于食用菌中粗蛋白質(zhì)含量的測(cè)定。

2.原理概要

采用半微量凱氏定氮法,即在加速劑存在下,以硫酸破壞樣品中有機(jī)物,加堿蒸餾,滴定所釋放的氨,計(jì)算出其含氮量。含氮量乘上換算系數(shù)6.25即得樣品的粗蛋白質(zhì)量。菇類可消化蛋白質(zhì)是粗蛋白的70%左右,含氮量乘上4.38,即為可消化蛋白質(zhì)的含量。


3.主要試劑和儀器

 3.1.主要試劑

硫酸:密度1.84g/mL;

鹽酸:密度1.18g/mL;

氫氧化鈉溶液:濃度400g/L,用分析純或化學(xué)純氫氧化鈉配制;

硼酸溶液:濃度20g/L,為蒸餾時(shí)的吸收液;

加速劑:將600g硫酸鉀和100g五水合硫酸銅(CuSO4·5H2O)混勻,充分研磨后過40目篩,試劑瓶?jī)?nèi)密封保存;

鹽酸標(biāo)準(zhǔn)溶液:濃度0.05mol/L或0.1mol/L,用無(wú)水碳酸鈉或鄰苯二甲酸氫鉀標(biāo)定其濃度,精確到小數(shù)點(diǎn)后第四位;

甲基紅-溴甲酚綠混合指示劑:50mL濃度為2g/L的溴甲酚綠95%乙醇溶液和10mL濃度為2g/L的甲基紅95%乙醇溶液混合。

 3.2.儀器

電熱鼓風(fēng)干燥箱;

小型植物粉碎機(jī):備有1mm孔徑的金屬篩網(wǎng);

分樣篩:備有孔徑0.42mm(40目)和孔徑0.84mm(20目)篩子;

玻璃研缽:備有研杵;

廣口瓶:帶磨口;

剪刀和小刀;

分析天平:感量0.0001g;

扭力天平;

可調(diào)電爐:0~600℃;

通風(fēng)櫥;

消煮架:鐵制,可使凱氏瓶在消煮時(shí)與垂直方向成30°~45°角;

硬質(zhì)凱氏瓶:容積100mL;

半微量凱氏定氮蒸餾裝置;

半微量滴定管:10mL;

彎頸三角漏斗:直徑25mm;

錐形瓶:250mL。

4.樣品制備

 4.1.取樣方法和數(shù)量

干制品(蘑菇干片、干香菇、黑木耳和銀耳等)按GB 12530中規(guī)定要求進(jìn)行。總量不得少于100g。

鮮菇在每批不同的地方隨機(jī)取樣作為原始樣品,總量不得少于1000g。

 4.2.試樣的制備

干品直接用剪刀剪成小塊,在80~100℃干燥箱中烘至發(fā)脆后冷卻,立即用小型植物粉碎機(jī)粉碎。棄去開始粉碎出的樣品(約占總樣十分之一)。粉碎過的樣品均需過40目篩。未能過篩部分再次粉碎或經(jīng)研缽內(nèi)研磨之后再過篩,直至全部樣品過篩為止。銀耳和木耳樣品因質(zhì)地關(guān)系經(jīng)粉碎后大部分樣品不能過40目篩,故要求全部樣品過20目篩,過篩后的樣品裝入清潔的廣口瓶?jī)?nèi)保存?zhèn)溆。樣品密封后填寫?biāo)簽,注明品名、日期、交樣單位和取樣人等。

鮮菇取樣后立即切成4mm厚度的菇片,鮮耳則用手撕成小塊均勻地?cái)傇诟稍锵鋬?nèi)墊有紗布的鐵絲網(wǎng)上,50℃鼓風(fēng)干燥6h以上。待樣品半干后再逐步提高溫度至80~100℃。樣品發(fā)脆之后冷卻,立即用粉碎機(jī)粉碎。其他操作同干品。


5.過程簡(jiǎn)述

稱樣:稱取試樣0.3~0.5g(蘑菇、香菇、草菇和平菇等高蛋白質(zhì)的樣品為0.3g,木耳、銀耳和茯苓等低蛋白質(zhì)含量的樣品則為0.5g),精確到0.0001g。同時(shí)按GB 12531中規(guī)定的方法稱樣測(cè)定試樣的含水量。

消煮:試樣無(wú)損地倒入凱氏瓶中,加入加速劑粉末3.5g,混勻,最后加入濃硫酸5mL,輕輕搖動(dòng)凱氏瓶使試樣完全濕潤(rùn)。消煮時(shí)利用消煮架將凱氏瓶斜放在電爐上加熱。瓶口加彎頸三角漏斗。開始時(shí)緩慢地加熱,待瓶?jī)?nèi)硫酸液沸騰后,調(diào)節(jié)電爐溫度,防止泡沫沖到凱氏瓶頸上。經(jīng)常旋轉(zhuǎn)凱氏瓶,直至有機(jī)物完全炭化、泡沫消失為止。隨后用猛火加熱,使溶液不斷處于沸騰狀態(tài)。溶液變清呈綠色之后繼續(xù)加熱0.5h后結(jié)束。整個(gè)過程在通風(fēng)櫥內(nèi)進(jìn)行。

蒸餾:裝好半微量定氮蒸餾裝置。使用前用蒸餾水沖洗干凈。在蒸氣發(fā)生瓶?jī)?nèi)加入2/3~3/4容積的蒸餾水。將冷凝管下端插入盛有10mL硼酸吸收液的250mL錐形瓶液面下,吸收液中預(yù)先加入5~6滴混合指示劑。通電加熱,待蒸氣產(chǎn)生后開始蒸餾。從加樣口將凱氏瓶中消煮好的樣品液倒入,并用蒸餾水沖洗凱氏瓶數(shù)次,確保樣品全部加入。立即加入氫氧化鈉溶液20mL,使樣品液呈強(qiáng)堿性。加樣口蓋塞封閉,通入蒸氣,使反應(yīng)室內(nèi)蒸餾液猛烈沸騰,釋放出的氨被吸收液所吸收,待吸收液開始變綠色之后繼續(xù)蒸餾5~6min,吸收液總量達(dá)100mL左右時(shí)停止蒸餾。

滴定:取出吸收瓶,用鹽酸標(biāo)準(zhǔn)液將吸收液由藍(lán)綠色滴定至灰紫色為終點(diǎn)。

空白試驗(yàn):不加試樣的加速劑和濃硫酸作為空白樣品,按上述步驟同時(shí)進(jìn)行測(cè)定?瞻自囼(yàn)所消耗的鹽酸標(biāo)準(zhǔn)溶液體積須小于0.25mL。


6.結(jié)果計(jì)算

 6.1.計(jì)算

式中:c——鹽酸標(biāo)準(zhǔn)溶液的濃度,mol/L;

V1——空白試驗(yàn)滴定消耗的鹽酸標(biāo)準(zhǔn)溶液體積,mL;

V2——樣品滴定消耗的鹽酸標(biāo)準(zhǔn)溶液體積,mL;

m——樣品的質(zhì)量,g;

0.014——氮的摩爾質(zhì)量,g/mmoL;

X——樣品含水量,%;

6.25——氮換算成粗蛋白質(zhì)的系數(shù)。

7.允許差

取平行測(cè)定結(jié)果的算術(shù)平均值為測(cè)定結(jié)果,保留小數(shù)后一位。

平行測(cè)定結(jié)果的絕對(duì)差值不大于0.2%。

8.來(lái)源:GBT 15673-2009

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